产品简介
Polyethylenimine Linear(PEI)溶液是由一种阳离子聚合物转染试剂,分子量40000,它能与核酸形成复合物,并使该复合物进入哺乳动物细胞。线性PEI转染试剂广泛适。该试剂可在含血清与抗生素的完全培养基中发挥作用,即使在有血清存在的情况下,它仍然能高效的将核酸导入细胞。实验操作简单,对大多数培养细胞都有较高的转染效率(用于常见细胞系,如HEK-293、HEK293T、Hep G2、Hela、CHO-K1、COS-1、COS-7、NIH/3T3和Sf9等),并且细胞毒性较低。
线性PEI转染试剂具有如下优点:
l 优越的转染效率
l 重组蛋白的高表达水平
l 与含血清的培养基相兼容
l 低细胞毒性,易于操作
质量控制
每批次产品均在标准条件下进行功能性转染测试,在HEK293T模型细胞中可获得高水平转染效率。具体效率会因细胞状态、质粒、培养条件和操作流程而异。在内部标准测试条件下,使用带EGFP的质粒转染HEK293T细胞的阳性率通常可达90%以上。
产品组成
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名称
编号 |
FSF0002 |
FSF0002 |
FSF0002 |
Storage |
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线性PEI转染试剂(MW40000) |
1ml |
10ml |
50ml |
2-8℃ |
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使用说明书 |
1份 |
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操作流程
前期准备(试剂与质粒准备):
细胞要求:使用适当保存和经常传代的健康细胞。确保培养基没有被细菌、真菌或支原体污染。如果细胞是近期复苏的液氮冻存细胞,请在转染前至少传代两次。建议用胶原酶。转染前12-24小时铺板,转染时细胞汇合度达到70%-80%;对于HEK-293、HEK293T、NIH/3T3和COS细胞,可提前两天铺板并适当降低密度。
质粒要求:请务必使用高质量转染级无内毒素质粒。通过 260 nm 光吸收测定 DNA 浓度,260 nm / 280 nm 比值确定 DNA 纯度(比值应该在 1.8~2.0 的范围之内)。如有可能,请通过琼脂糖凝胶电泳检测质粒的完整性。
贴壁细胞转染方法
①、接种细胞,转染前一天,消化细胞并计数。调整细胞浓度,将细胞铺入细胞培养的器皿,每个孔置入的细胞量应能使转染时细胞汇合度达到 70~80%。
②、准备DNA-PEI复合物, DNA、PEI 试剂和稀释剂在进行以下步骤前需先使其升至室温。用 Opti-MEM 或其他适合的无蛋白培养基稀释适量DNA。用同样的培养基稀释 PEI 试剂。每1μg DNA 需用 2~6μL(具体参考表2)线性PEI转染试剂。一边轻轻涡旋装有 DNA溶液的试管,一边将稀释的线性PEI转染试剂滴加至试管中(注意:请勿颠倒添加顺序)。充分混匀后,室温静置10~25 min以形成DNA-PEI复合物。当溶液体积较大时,请用圆底聚丙烯管,例如 Falcon 5mL /14 mL 离心管。
③、转染细胞,直接向每个孔中加入DNA-PEI复合物并轻轻摇动培养板/培养皿。本品可在含血清培养条件下进行转染。若采用无血清条件形成复合物并加样,可根据细胞耐受性在4~6 h后补加完全培养基或更换为新鲜完全培养基。 【注】:需要将培养板中的培养基全部弃掉,因为此时未被细胞摄取的PEI-DNA复合物仍残留在培养基中,持续接触会增加细胞毒性,影响后续细胞状态和转染效率。换液过程中用PBS建议进行1-2次清洗。
④、孵育细胞和分析结果,在CO2培养箱中37℃下孵育细胞至可以分析检测。转染后最快7h即可检测到转入基因的表达。 请自行确定最适合检测时间。
悬浮细胞转染方法
①、细胞准备,转染前一天或当天准备处于对数生长期的悬浮细胞,确保细胞状态良好,建议转染时细胞活率不低于90%。根据细胞类型调整细胞密度,通常可从 0.5×106~2.0×106 cells/mL 的范围开始优化。
②、准备DNA-PEI复合物,将 DNA、线性PEI转染试剂及稀释液平衡至室温。用 Opti-MEM 或其他适合的无蛋白、无血清缓冲液分别稀释质粒 DNA和线性PEI转染试剂。按照预设比例混合DNA和PEI。建议初始优化条件可从每1μgDNA对应1~6μL(具体参考表2)转染试剂开始。最佳比例需根据细胞类型和应用目的进行优化。将稀释后的 PEI 溶液缓慢加入DNA溶液中,轻轻吹打或混匀,避免剧烈振荡。室温静置10~20 min,形成DNA-PEI复合物。
③、加入细胞,将待转染悬浮细胞接种于适宜培养容器中,并调整至目标工作体积和细胞密度。将形成好的 DNA-PEI 复合物缓慢加入细胞悬液中,轻轻混匀,使复合物在体系中均匀分散。转染期间可维持细胞于常规培养条件下孵育。
④、培养与换液,将细胞置于37℃、5% CO₂培养箱中继续培养。对于耐受性较好的悬浮细胞,可直接继续培养并在 24~48 h 检测外源基因表达。对于对转染较敏感的细胞,可在转染后 4~24 h 通过离心换液或补加新鲜培养基,以降低转染复合物带来的细胞压力。具体条件需根据细胞状态进行优化。
⑤、结果检测,部分报告基因可在转染后较早时间观察到表达,但通常建议在 24~72 h 进行转染效率和表达水平检测。
不同细胞培养容器转染用量(表2):
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细胞培养容器 |
表面积 |
稀释液体积 |
DNA的量 |
转染试剂的量 |
培养基总量 |
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96-well |
0.3cm2 |
10uL |
0.1ug |
0.1uL |
100uL |
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48-well |
0.7cm2 |
20uL |
0.2ug |
0.3uL |
200uL |
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24-well |
1.9cm2 |
50uL |
0.5ug |
1uL |
500uL |
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12-well |
3.8cm2 |
50uL |
1ug |
2uL |
1mL |
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6-well/35mmdish |
10cm2 |
100uL |
2ug |
4uL |
2mL |
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60mm dish/T25flask |
21cm2 |
200uL |
4ug |
8uL |
4mL |
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100mm dish/T75flask |
58cm2 |
500uL |
10ug |
20uL |
10mL |
注意事项
1)、对于接触抑制敏感的细胞,可适当降低铺板密度。
2)、即使在有蛋白(如 10%的血清)存在的情况下,DNA-PEI复合物仍能转染细胞,但是 DNA-PEI复合物必须在无蛋白存在的条件下形成。我们推荐使用 Opti-MEM 培养基以达到最佳转染效率。其他的无蛋白培养基则需测试与线性PEI转染试剂的兼容性。
3)、对大多数细胞而言,每1ug使3.0ul PEI转染试剂都能获得较高转染效率。使用者也可尝试每 1 ugDNA 使用1~6 ul体积线性PEI转染试剂进行优化。
4)、为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。